一、制作标准曲线(测定细胞具体数量)
1. 先用细胞计数板计数所制备的细胞悬液中的细胞数量,然后接种细胞。
2. 按比例(例如:1/2比例)依次用培养基等比稀释成一个细胞浓度梯度,一般要做3-5个细胞浓度梯度,每组3~6个复孔。
3. 接种后培养2-4小时使细胞贴壁,然后加CCK-8试剂培养一定时间后测定O.D.值,制作出一条以细胞数量为横坐标,O.D.值为纵坐标的标准曲线。根据此标准曲线可以测定出未知样品的细胞数量(适用此标准曲线的前提是实验的条件要一致,尤其加入CCK-8后的培养时间要一致)。
二、细胞活性检测
1. 在96孔板中接种细胞悬液(100μl/孔)。将培养板放在培养箱中预培养(37℃,5% CO₂)。
2. 向每孔加入10μl的CCK-8溶液(注意不要在孔中生成气泡,以免影响O.D.的读数)。
3. 将培养板在培养箱内孵育1-4小时。
4. 用酶标仪测定450nm处的吸光度。
5. 如果暂时不测定O.D.值,可以向每孔中加入10μl的0.1M的HCl溶液或1% w/v SDS溶液,并遮盖培养板避光室温保存,24小时内吸光度不会发生变化。
三、细胞增殖-毒性检测(以96孔板为例)
1. 在96孔板中配置100μl的细胞悬液(通常细胞增殖实验每孔加入100μl约2000个细胞,细胞毒性实验每孔加入100μl约5000个细胞。具体每孔所用的细胞的数目,需根据细胞的大小、细胞增殖速度的快慢等因素决定)。按照实验需要,进行预培养。
2. 向培养板加入1-10μl不同浓度的待测药物刺激。
3. 将培养板在培养箱孵育一段适当的时间(后面有具体细胞的建议时间,例如:6、12、24或48小时)。
4. 每孔加入10μl的CCK-8溶液(注意不要在孔中生成气泡,以免影响O.D.读数)。如果起始的培养体积为200μl,则需加入20μl CCK-8溶液,其他情况以此类推。可以用加了相应量细胞培养液和CCK-8溶液但没有加入细胞的孔作空白对照。如果担心所使用的药物会干扰检测,需设置加了相应量细胞培养液、药物和CCK-8溶液但没有加入细胞的孔作为空白对照。
5. 在细胞培养箱内继续孵育1~4小时(对于大多数情况孵育1小时就可以)。时间的长短根据细胞的类型和细胞的密度等情况而定,初次实验时可以在0.5、1、2 和4小时候分别用酶标仪检测,然后选取吸光度范围比较适宜的一个时间点用于后续实验。
6. 用酶标仪测定在450nm处的吸光度。可以使用大于600nm的波长,例如650nm,作为参考波长进行双波长测定。
7. 如果暂时不测定O.D.值,可以向每孔中加入10μl 0.1M的HCl溶液或者1% w/v SDS溶液,并遮盖培养板避光室温保存,24小时内吸光度不会发生变化。
注意:如果待测物质有氧化或还原特性,可在加CCK-8之前更换新鲜培养基(先用培养基洗涤细胞两次),去掉药物影响。如果药物影响比较小,可以不更换培养基,直接扣除培养基中加入药物后的空白吸收即可。
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